Preview

Пищевые системы

Расширенный поиск

Оценка влияния экстракта зоогумуса на биохимию и вегетативный рост стевии медовой (Stevia Rebaudiana)

https://doi.org/10.21323/2618-9771-2026-9-2-316-328

Аннотация

Одним из положений доктрины продовольственной безопасности России регламентируется создание устойчивых и эффективных технологий экологического выращивания растений, продуцирующих сладкие вещества как природные сахарозаменители. Во многом это обусловлено высокой распространенностью болезней, ассоциированных с избыточным потреблением рафинированных углеводов. В связи с этим требуется системная модификация образа жизни и рациона питания людей из группы высокого риска. Среди растений-сахарозаменителей выделяют стевию медовую (Stevia rebaudiana Bertoni). В настоящее время созданы районированные сорта, предназначенные для возделывания стевии в отдельных климатических регионах России. Однако при выращивании культуры в открытом грунте аграрии зачастую сталкиваются с проблемой слабой всхожести исходного семенного материала, которая для большинства культивируемых генотипов не превышает 15–25 %. Перспективной альтернативой данному подходу является выращивание стевии на искусственных нейтральных субстратах, в закрытом грунте с использованием метода интенсивной светокультуры, при минимизации или полном отказе от внесения минеральных удобрений. На сегодняшний день практически отсутствуют технологические решения, адаптированные для органического выращивания данной культуры с целью максимизации скорости ее роста и оптимизации конечных морфологических и биохимических показателей. Поэтому целью данного исследования являлось проведение сравнительной оценки влияния разных удобрительных методик на урожайность и обмен веществ в зеленой биомассе листьев растений. В качестве органического варианта предложен способ выращивания растений в защищенном грунте с применением нового типа органического удобрения в виде жидких экстрактов, полученных из зоогумуса насекомого черной львинки (Hermetia illucens). Срок вегетации составил 60 суток. Экспериментальный дизайн был рандомизирован десятью повторностями на каждый вариант. Полученные при сборе и анализе зеленой биомассы экспериментальные данные, помимо традиционных методов статистической обработки, были проанализированы с помощью специализированной прогностической нейросети, разработанной авторами. Нейросеть позволяет рассчитывать индексы когнитивной значимости урожая (Cognitive Salience Index), которые используются для количественной оценки интенсивности массона-копительных и биохимических процессов в растениях при определении оптимального режима их питания. Расчеты производились на основе сопоставления изменений содержания компонентов в конечном профиле аминокислот, жирных кислот и пуле эссенциальных элементов, с вариабельностью накопления общего хлорофилла и биометрическими характеристиками побегов. В удобрительную схему опыта также был заложен вариант чистого контроля, предусматривающий выращивание растений на фильтрованной воде. По итогу по всем полученным показателям здесь были зафиксированы минимальные значения в росте и развитии. Разница в наборе веса, высоты, метаболизме и аккумуляции биогенных веществ между вариантами растений, выращенных на минеральной и органической основе, была несущественна, что доказывает перспективу использования последних в качестве экологической альтернативы. При этом, уровень консолидации питательных веществ в биомассе растений, выращенных с применением зоогумуса H. Illucens, превышал аналогичный показатель для минерального удобрения по индексу CSIfract.

Об авторах

Я. В. Пухальский
Всероссийский научно-исследовательский институт пищевых добавок
Россия

Пухальский Ян Викторович – научный сотрудник, лаборатория промышленных биотехнологических инноваций

191014, Санкт-Петербург, Литейный пр., 55



С. И. Лоскутов
Всероссийский научно-исследовательский институт пищевых добавок
Россия

Лоскутов Святослав Игоревич – кандидат сельскохозяйственных наук, заведующий лабораторией промышленных биотехнологических инноваций

191014, Санкт-Петербург, Литейный пр., 55



Н. И. Воробьев
Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии
Россия

Воробьев Николай Иванович – кандидат технических наук, ведущий научный сотрудник, лаборатория биоразнообразия сельскохозяйственных микроорганизмов

196608, Санкт-Петербург, Пушкин‑8, шоссе Подбельского, 3



Х. К. Питти
Институт сельскохозяйственных инноваций Панамы
Панама

Питти Хавьер Кабальеро – PhD, научный сотрудник, экспериментальная станция Серро-Пунта, Центр сельскохозяйственных инноваций

Здания 161 и 162 Калле Карлос Ренато Лара Сьюдад-дель-Сабре Клейтон



Р. И. Глушаков
Военно-медицинская академия имени С. М. Кирова; Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет
Россия

Глушаков Руслан Иванович – доктор медицинских наук, доцент, Начальник научно-исследовательского отдела (медико-биологических исследований) НИЦ

194044, Санкт-Петербург, ул. Академика Лебедева, 6



В. Ю. Ситнов
Всероссийский научно-исследовательский институт пищевых добавок
Россия

Ситнов Вениамин Юрьевич – директор

191014, Санкт-Петербург, Литейный проспект, 55



Список литературы

1. Синявина, Н. Г., Кочетов, А. А., Егорова, К. В. (2022). Стевия (Stevia rebaudiana Bertoni): биологические особенности и факторы, влияющие на рост растений и накопление сладких гликозидов. Ученые записки Казанского университета. Серия: Естественные науки, 164(1), 46–75.

2. Lemus-Mondaca, R., Vega-Gálvez, A., Zura-Bravo, L., Ah-Hen, K. (2012). Stevia rebaudiana Bertoni, source of a highpotency natural sweetener: A comprehensive review on the biochemical, nutritional and functional aspects. Food Chemistry, 132(3), 1121–1132. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2011.11.140.

3. Abou-Arab, A. E., Abou-Arab, A. A., Abu-Salem, M. F. (2010). Physio-chemical assessment of natural sweeteners stevioside produced from Stevia rebaudiana Bertoni plant. African Journal of Food Science, 4(5), 269–281. https://doi.org/10.21608/jfds.2009.115819.

4. Samuel, P., Ayoob, K. T., Magnuson, B. A., Wölwer-Rieck, U., Jeppesen, P. B., Rogers, P. J. et al. (2018). Stevia leaf to stevia sweetener: Exploring its science, benefits, and future potential. Journal of Nutrition, 148(7), 1186S-1205S. https://doi.org/10.1093/jn/nxy102.

5. Dhanish, D., Junia, G. (2019). Remedial potentials of sweet leaf a review on Stevia rebaudiana. International Journal of Pharmaceutical Sciences Review and Research, 54, 91–95.

6. Žlabur, J. Š., Voca, S., Dobricevic, N., Ježek, D., Bodiljkov, T., Brnčić, M. (2013). Stevia rebaudiana Bertoni — a review of nutritionaland biochemical properties of natural sweetener. Agriculturae Conspectus Scientificus, 78, 25–30.

7. Basharat, S., Huang, Z., Gong, M., Lv, X., Ahmed, A., Hussain, I. et al. (2021). A review on current conventional and biotechnical approaches to enhance biosynthesis of steviol glycosides in Stevia rebaudiana. Chinese Journal of Chemical Engineering, 30, 92–104. https://doi.org/10.1016/j.cjche.2020.10.018.

8. Myint, K.Z., Wu, K., Xia, Y., Fan, Y., Shen, J., Zhang, P. et al. (2020). Polyphenols from Stevia rebaudiana (Bertoni) leaves and their functional properties. Journal of Food Science, 85(2), 240–248. https://doi.org/10.1111/1750-3841.15017.

9. Goyal, S. K., Samsher, Goyal, R. K. (2010). Stevia (Stevia rebaudiana) a bio-sweetener: A review. International Journal of Food Sciences and Nutrition, 61(1), 1–10. https://doi.org/10.3109/09637480903193049.

10. Salvador-Reyes, R., Sotelo-Herrera, M., Paucar-Menacho, L. (2014). Estudio de la Stevia (Stevia rebaudiana Bertoni) como edulcorante natural y su uso en beneficio de la salud. Scientia Agropecuaria, 5, 157–163. [Salvador-Reyes, R., Sotelo-Herrera, M., Paucar-Menacho, L. (2014). Study of Stevia (Stevia rebaudiana Bertoni) as a natural sweetener and its use in benefit of the health. Scientia Agropecuaria, 5, 157–163. (In Spanish)] https://doi.org/10.17268/sci.agropecu.2014.03.06.

11. Chatsudthipong, V., Muanprasat, C. (2009). Stevioside and related compounds: Therapeutic benefits beyond sweetness. Pharmacology and Therapeutics, 121(1), 41–54. https://doi.org/10.1016/j.pharmthera.2008.09.007.

12. Amchra, F. Z., Al Faiz, C., Chaouqi, S., Khiraoui, A., Benhmimou, A., Guedira, T. (2018). Effect of Stevia rebaudiana, sucrose and aspartame on human health: A comprehensive review. Journal of Medicinal Plants Studies, 6, 102–108.

13. Каххорова, С. И. К., Кароматов, И. Д. (2017). Пищевое и лекарственное растение стевия (обзор литературы). Биология и интегративная медицина, 11, 107–125.

14. Sharma, S., Walia, S., Singh, B., Kumar, R. (2016). Comprehensive review on agro technologies of low-calorie natural sweetener stevia (Stevia rebaudiana Bertoni): A boon to diabetic patients. Journal of the Science of Food and Agriculture, 96(6), 1867–1879. https://doi.org/10.1002/jsfa.7500.

15. Patel, S., Navale, A. (2024). The natural sweetener stevia: An updated review on its phytochemistry, health benefits, and anti-diabetic study. Current Diabetes Reports, 20(2), Article e010523216398. https://doi.org/10.2174/1573399819666230501210803.

16. Arumugam, B., Subramaniam, A., Alagaraj, P. (2020). Stevia as a natural sweetener: A review. Cardiovascular and Hematological Agents in Medicinal Chemistry, 18(2), 94–103. https://doi.org/10.2174/1871525718666200207105436.

17. Aranda-González, I., Segura-Campos, M., Moguel-Ordoñez, Y., Betancur-Ancona D. (2014). Stevia rebaudiana Bertoni. Un potencial adyuvante en el tratamiento de la diabetes mellitus. CyTA — Journal of Food, 12(3), 218–226. [Aranda-González, I., Segura-Campos, M., Moguel-Ordoñez, Y., Betancur-Ancona D. (2014). Stevia rebaudiana Bertoni: A potential adjuvant in the treatment of diabetes mellitus. CyTA — Journal of Food, 12(3), 218–226. (In Spanish)] https://doi.org/10.1080/19476337.2013.830150.

18. Anton, S. D., Martin, C. K., Han, H., Coulon, S., Cefalu, W. T., Geiselman, P. et al. (2010). Effects of stevia, aspartame, and sucrose on food intake, satiety, and postprandial glucose and insulin levels. Appetite, 55(1), 37–43. https://doi.org/10.1016/j.appet.2010.03.009.

19. Ahmed, S. R., Mukta, S. (2017). Review on Stevia rebaudiana as a non-caloric natural sweetener producing plant. Journal of the Sylhet Agricultural University, 4(1), 15–25.

20. Ahmad, J., Khan, I., Blundell, R., Azzopardi, J. I., Mahomoodally, F. (2020). Stevia rebaudiana B.: An updated review of its health benefits, industrial applications and safety. Trends in Food Science and Technology, 100, 177–189. https://doi.org/10.1016/j.tifs.2020.04.030.

21. Purkayastha, S., Markosyan, A., Prakash, I., Bhusari, S., Pugh, G., Lynch, B. Jr. et al. (2016). Steviol glycosides in purified stevia leaf extract sharing the same metabolic fate. Regulatory Toxicology and Pharmacology, 77, 125–133. https://doi.org/10.1016/j.yrtph.2016.02.015.

22. Pol, J., Hohnova, B., Hyotylainen, T. (2007). Characterisation of Stevia rebaudiana by comprehensive two-dimensional liquid chromatography time-of-flight mass spectrometry. Journal of Chromatography A, 1150(1–2), 85–92. https://doi.org/ https://doi.org/10.1016/j.chroma.2006.09.008.

23. Suttajit, M., Vinitketkaumnuen, U., Meevatee, U., Buddhasukh, D. (1993). Mutagenicity and human chromosomal effect of stevioside, a sweetener from Stevia rebaudiana Bertoni. Environmental Health Perspectives, 101(suppl 3), 53–56. https://doi.org/10.1289/ehp.93101s353.

24. Barriocanal, L. A., Palacios, M., Benitez, G., Benitez, S., Jimenez, J. T., Jimenez, N. et al. (2008). Apparent lack of pharmacological effect of steviol glycosides used as sweeteners in humans. A pilot study of repeated exposures in some normotensive and hypotensive individuals and in Type 1 and Type 2 diabetics. Regulatory Toxicology and Pharmacology, 51(1), 37–41. https://doi.org/10.1016/j.yrtph.2008.02.006.

25. Jeong, I.-Y., Lee, H.-J., Jin, G.-H., Park, Y.-D., Choi, D.-S., Kang, M.-A. (2010). Anti-inflammatory activity of Stevia rebaudiana in LPS-induced RAW 264.7 cells. Journal of Food Science and Nutrition, 15(1), 14–18. https://doi.org/10.3746/jfn.2010.15.1.014.

26. Arya, A., Kumar, S., Kasana, M. S. (2012). Anti-inflammatory activity of in vitro regenerated calli and in vivo plant of Stevia rebaudiana (Bert.) Bertoni. International Journal of Scientific and Research Publications, 2(8), 1–5.

27. Papaefthimiou, M., Kontou, P. I., Bagos, P. G., Braliou, G. G. (2023). Antioxidant activity of leaf extracts from Stevia rebaudiana Bertoni exerts attenuating effect on diseased experimental rats: A systematic review and meta-analysis. Nutrients, 15(15), Article 3325. https://doi.org/10.3390/nu15153325.

28. Ruiz-Ruiz, J. C., Moguel-Ordoñez, Y. B, Matus-Basto A. J., Segura-Campos M. R. (2015). Antidiabetic and antioxidant activity of Stevia rebaudiana extracts (Var. Morita) and their incorporation into a potential functional bread. Journal of Food Science and Technology, 52(12), 7894–7903. https://doi.org/10.1007/s13197-015-1883-3.

29. Ghanta, S., Banerjee, A., Poddar, A., Chattopadhyay, S. (2008). Oxidative DNA damage preventive activity and anti-oxidant potential of Stevia rebaudiana (Bertoni) Bertoni, a natural sweetener. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 55(26), 10962–10967. https://doi.org/10.1021/jf071892q.

30. Shukla, S., Mehta, A., Mehta, P., Bajpai, V. K. (2012). Antioxidant ability and total phenolic content of aqueous leaf extract of Stevia rebaudiana Bert. Experimental and Toxicologic Pathology, 64(7–8), 807–811. https://doi.org/10.1016/j.etp.2011.02.002.

31. Rao, G. N., Rao, P. P., Balaswamy, K., Satyanarayana, A. (2014). Antioxidant activity of stevia (Stevia rebeudiana L.) leaf powder and a commercial stevioside powder. Journal of Food and Pharmaceutical Sciences, 2(2), 32–38.

32. Kedik, S. A., Yartsev, E. I., Stanishevskaya, I. E. (2009). Antiviral activity of dried extract of Stevia. Pharmaceutical Chemistry Journal, 43(4), 198–199.

33. Iawsipo, P., Somana, J., Patthamawan, P., Kaewmahatthai, T., Roy, S. (2024). Exploring stevia leaf residue extracts: Antibacterial and antioxidant potential as natural food preservatives. Trends in Sciences, 21(9), Article 8113. https://doi.org/10.48048/tis.2024.8113.

34. Kim, I.-S., Yang, M., Lee, O.-H., Kang, S.-N. (2011). Theantioxidant activity and the bioactive compound content of Stevia rebaudiana water extracts. LWT — Food Science and Technology, 44(5), 1328–1332. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2010.12.003.

35. Das, K. (2013). Wound healing potential of aqueous crude extract of Stevia rebaudiana in mice. Revista Brasileira de Farmacognosia, 23(2), 351–357. https://doi.org/10.1590/s0102-695x2013005000011.

36. Gupta, E., Purwar, S., Sundaram, S., Rai, G. K. (2013). Nutritional and therapeutic values of Stevia rebaudiana: A review. Journal of Medicinal Plants Research, 7(46), 3343–3353.

37. Abdel-Fatt, S. M., Badr, A. N., Abu Seif, F. A.-H., Mohamed Ali, S., Ahmed Hassan, R. (2018). Antifungal and anti-mycotoxigenic impact of eco-friendly extracts of wild stevia. Journal of Biological Sciences, 18(8), 488–499. https://doi.org/10.3923/jbs.2018.488.499.

38. Ghosh, S., Subudhi, E., Nayak, S. (2008). Antimicrobial assay of Stevia rebaudiana Bertoni leaf extracts against 10 pathogens. International Journal of Integrative Biology, 2(1), 27–31.

39. Jayaraman, S., Manoharan, M., Illanchezian, S. (2008). In-vitro antimicrobial and antitumor activities of Stevia rebaudiana (Asteraceae) leaf extracts. Tropical Journal of Pharmaceutical Research, 7(4), 1143–1149. https://doi.org/10.4314/tjpr.v7i4.14700.

40. Moselhy, S. S., Ghoneim, M. A., Khan, J. A. (2016). In vitro and in vivo evaluation of antimicrobial and antioxidant potential of stevia extract. African Journal of Traditional, Complementary and Alternative Medicines, 13(6), 18–21. https://doi.org/10.21010/ajtcam.v13i6.4.

41. Chaudhary, S., Kiran, S., Sreeja, V. (2024). Functional aspects of stevia: A review. Journal of Phytopharmacology, 13(1), 64–69. https://doi.org/10.31254/phyto.2024.13109.

42. Ntalli, N., Kasiotis, K. M., Baira, E., Stamatis, C. L., Machera, K. (2020). Nematicidal activity of Stevia rebaudiana (Bertoni) assisted by phytochemical analysis. Toxins, 12(5), Article 319. https://doi.org/10.3390/toxins12050319.

43. Karimi, M., Hashemi, J., Ahmadi, A., Abbasi, A., Esfahani, M. (2014). Study on the bioactivity of steviol and isosteviol in stevia (Stevia rebaudiana Bertoni). Acta Physiologiae Plantarum, 36(12), 3243–3248. https://doi.org/10.1007/s11738-014-1690-x.

44. Огороднова, У. А., Сапунова, А. С., Тимофеева, О. А., Миронов, В. Ф. (2020). Стевиозид обладает максимальной биологической активностью среди природных дитерпенов стевии. Доклады Российской академии наук. Науки о жизни, 492(1), 226–229.

45. Синявина, Н. Г., Кочетов, А. А., Егорова, К. В., Вертебный, В. Е., Хомя- ков, Ю. В. (2020). Водный экстракт из листьев стевии (Stevia rebaudiana Bertoni) как биостимулятор роста растений в светокультуре. Овощи России, 6, 31–35.

46. Khiraoui, A., Bakha, M., Boulli, A., Hasib, A., Al Faiz, C. (2021). The productivity of Stevia rebaudiana (Bertoni) on dry leaves and steviol glycosides of four varieties grown in six regions of Morocco. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, 37, Article 102151. https://doi.org/10.1016/j.bcab.2021.102151.

47. Mahdavi, M., Jurado, F., Schmitt, K., Ramos R. A. V. (11–12 March, 2023). Future heat and electricity generation from Bertoni plant in Morocco. IEEE IAS Global Conference Renewable Energy and Hydrogen Technologies, Male, Maldives. IEEE, 2023. https://doi.org/10.1109/GlobConHT56829.2023.10087694.

48. Mahdavi, M., Awaafo, A. Jurado, F. (2024). A sustainable rural electrification of morocco using stevia biomass power generation: Lessons for paraguay. IEEE Latin America Transactions, 22(11), 911–919. https://doi.org/10.1109/TLA.2024.10735445.

49. Кочетов, А. А. (2012). Перспективы выращивания стевии [Stevia rebaudiana Bertoni (l.)] в нечерноземной зоне России. Аграрная Россия, 2, 2–4.

50. Кочетов, А. А., Синявина, Н. Г. Стевия (Stevia rebaudiana Bertoni): биохимический состав, терапевтические свойства и использование в пищевой промышленности (обзор). Химия растительного сырья, 2, 5–27.

51. Rahmesh, K., Singh, V., Megeji, N. (2006). Cultivation of stevia (Stevia rebaudiana Bertoni): A comprehensive review. Advances in Agronomy, 89, 137–177. https://doi.org/10.1016/S0065-2113(05)89003-0.

52. Kumar, R., Sood, S., Sharma, S., Kasana, R. C., Pathania, V. L., Singh, B. et al. (2013). Effect of plant spacing and organic mulch on growth, yield, and quality of natural sweetener plant stevia and soil fertility in western Himalaya. International Journal of Plant Production, 8(3), 311–334.

53. Pal, P.K., Kumar, R., Guleria, V., Mahajan, M., Prasad, R., Pathania, V. et al. (2015). Crop-ecology and nutritional variability influence growth and secondary metabolites of Stevia rebaudiana Bertoni. BMC Plant Biology, 15(1), Article 67. https://doi.org/10.1186/s12870-015-0457-x.

54. Jarma-Orozco, A., Combatt, E. M., Polo, J. (2012). Glycoside contents depending on the nutrient deficiencies in Stevia rebaudiana Bert. Revista UDCA de Actualidad y Divulgacion Cientifica, 15(1), 107–116.

55. Büyük, G., Bayram, C. A., İnan, M., Kırpık, M. (2022). The effect of organic and inorganic fertilizers on plant nutrient content and agronomic performance of stevia. Journal of Plant Nutrition, 45(15), 2303–2314. https://doi.org/10.1080/01904167.2022.2063739.

56. Bidabadi, S. S., Afazel, M., Poodeh, S. D. (2016). The effect of vermicompost leachate on morphological, physiological andbiochemical indices of Stevia rebaudiana Bertoni in a soilless culture system. International Journal of Recyclingof Organic Waste in Agriculture, 5(3), 251–262. https://doi.org/10.1007/s40093-016-0135-5.

57. Пендюрин, Е. А., Рыбина, С. Ю., Смоленская, Л. М. (2020). Использование зоокомпоста Черной львинки в качестве органического удобрения. Аграрная наука, 7–8, 106–110.

58. Шинкарев, С. М., Аксенов, А. В., Тарасов, С. И. (2008). Применение зоогумуса в качестве органического удобрения в защищенном грунте. Плодородие, 4(43), 17–18.

59. Пендюрин, Е. А., Здоровцов, В. А., Рыбина, С. Ю., Святченко, А. В. (2024). Агрохимические характеристики зоокомпоста личинок насекомого Черная львинка. Агрохимический вестник, 3, 59–62.

60. Abd El-Wahab, M. A., Badawy, M. Y., Abd El-Aleem, W. H., Bakeer, S. M. (2022). Studying the effect of mixtures of agricultural soil on two Stevia cultivars under a hydroponic system. Journal of Medicinal Plants Studies, 10(2), 106–111.

61. Sangaré, M., Nemati, M. R., Fortin, J. P. (2013). Beneficial effect of coconut fiber and peat on the physical quality of nursery substrates. Acta Horticulturae, 1013, 175–180. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2013.1013.20.

62. Lefever, K., Laubscher, C. P., Ndakidemi, P. A., Nchu, F. (2017). Effects of pH and phosphorus concentrations on the chlorophyll responses of Salvia chamelaeagnea (Lamiaceae) grown in hydroponics. Chapter in a book: Chlorophyll, IntechOpen, 2026. https://doi.org/10.5772/67610.

63. Kyriacou, M. C., El-Nakhel, C., Pannico, A., Graziani, G., Soteriou, G. A., Giordano, M. et al. (2020). Phenolic constitution, phytochemical and macronutrient content in three species of microgreens as modulated by natural fiber and synthetic substrates. Antioxidants, 9(3), Article 252. https://doi.org/10.3390/antiox9030252.

64. Romano, N., Powell, A., Islam, S., Fischer, H., Renukdas, N., Sinha, A. K. et al. (2022). Supplementing aquaponics with black soldier fly (Hermetia illucens) larvae frass tea: Effects on the production and composition of sweet potato slips and sweet banana peppers. Aquaculture, 555, Article 758160. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2022.738160.

65. Romano, N., Fischer, H., Powell, A., Sinha, A. K., Islam, S., Deb, U. et al. (2022). Applications of black solider fly (Hermetia illucens) larvae frass on sweetpotato slip production, mineral content and benefit-cost analysis. Agronomy, 12(4), Article 928. https://doi.org/10.3390/agronomy12040928.

66. Frimpong, K. A., Phares, C. A., Boateng, I., Abban-Baidoo, E., Apuri, L. (2021). One-time application of biochar influenced crop yield across three cropping cycles on tropical sandy loam soil in Ghana. Heliyon, 7(2), Article e06267. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2021.e06267.

67. Beeby, J., Moore, S., Taylor, L., Nderitu, S. (2020). Effects of a one-time organic fertilizer application on long-term crop and residue yields, and soil quality measurements using biointensive agriculture. Frontiers in Sustainable Food Systems, 4, Article 67. https://doi.org/10.3389/fsufs.2020.00067.

68. Das, N., Islam, M. S., Kashem, M. A., Osman, K. (2022). Influence of one-time application of vermicompost and npk fertilizers on the growths and mineral nutrients of Indian Spinach (Basella alba L.). Journal of Soil Science and Plant Nutrition, 22(6), 2107–2121. https://doi.org/10.1007/s42729-022-00810-2.

69. Wijitkosum, S., Sriburi, T., Toonsiri, P. (2025). Effect of one-time application of biochar and compost on soil and maize during five-time consecutive periods of crop cultivation. Emerging Science Journal, 9(1), 114–130. https://doi.org/10.28991/ESJ-2025-09-01-07.

70. Atas, M., Eruygur, N., Ucar, E., Ozyigit, Y., Turgut, K. (2018). The effects of different nitrogen doses on antioxidant and antimicrobial activity of Stevia (Stevia rebaudiana Bert.). Cellular and Molecular Biology, 64(2), 39–45. https://doi.org/10.14715/cmb/2018.64.2.8.

71. Śniegowska, J., Biesiada, A., Gasiński, A. (2024). Influence of the nitrogen fertilization on the yield, biometric characteristics and chemical composition of Stevia rebaudiana bertoni grown in poland. Molecules, 29(8), Article 1865. https://doi.org/10.3390/molecules29081865.

72. Tavarini, S., Sgherri, C., Ranieri, A. M., Angelini, L. G. (2015). Effect of nitrogen fertilization and harvest time on steviol glycosides, flavonoid composition, and antioxidant properties in Stevia rebaudiana Bertoni. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 63(31), 7041–7050. https://doi.org/10.1021/acs.jafc.5b02147.

73. Maniruzzaman, M., Chowdhury, M. A. H., Mohiuddin, K., Chowdhury, T. (2016). Nitrogen requirement and critical N content of stevia grown in two contrasting soils of Bangladesh. Research in Agriculture Livestock and Fisheries, 3(1), 87–97. https://doi.org/10.3329/ralf.v3i1.27862.

74. Debarba, R. J., Deschamps, C., Kanis, L. A., Moterle, D., Rampelotti, M. (2021). Effects of nitrogen fertilization on growth and yield of diterpene glycosides in stevia (Stevia rebaudiana Bertoni). Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 15(1), Article e10591. https://doi.org/10.17584/rcch.2021v15i1.10591.

75. Mahajan, M., Pal, P. K. (2022). Yield response, accumulation of bioactive ingredient and ion uptake of Stevia rebaudiana to different soil-moisture and nitrogen levels. Agricultural Water Management, 264, Article 107511. https://doi.org/10.1016/j.agwat.2022.107511.

76. Tadesse, N. (2019). The response of stevia (Stevia rebaudiana L.) to nitrogen and phosphorous fertilizer rates at Menagesha, West Ethiopia. International Journal of Environmental Sciences and Natural Resources, 22(3), Article 556090. https://doi.org/10.19080/IJESNR.2019.22.556090.

77. Maniruzzaman, M., Chowdhury, T., Rahman, M. A., Chowdhury, M. A. H. (2017). Phosphorus use efficiency and critical P content of stevia grown in acid and non-calcareous soils of Bangladesh. Research in Agriculture Livestock and Fisheries, 4(2), 55–68. https://doi.org/10.3329/ralf.v4i2.33717.

78. Inugraha, M. D. M., Widaryanto, E. (2014). Response of stevia (Stevia rebaudiana Bertoni M) to nitrogen and potassium fertilization. IOSR Journal of Agriculture and Veterinary Science, 7(10), 47–55. https://doi.org/10.9790/2380-071014755.

79. Maniruzzaman, M, Chowdhury, T., Rahman, M. A., Chowdhury, M. A. H. (2017). Potassium requirement for leaf biomass yield and K nutrition of stevia. Fundamental and Applied Agriculture, 2(3), 297–302. https://doi.org/10.5455/faa.276431.

80. Gatie, K. D., Ali, H. A., Mohsen, K. H. (2022). Effect of nitrogen and potassium application on growth, yield, and quality of stevia (Stevia rebaudiana Bertoni). Indian Journal of Ecology, 49(18), 148–154.

81. Verma, P. P. S., Kumar, A., Padalia, R. C., Singh, V. R. (2020). Influence of NPK levels on growth and yield of Stevia rebaudiana Bertoni under hills of Uttarakhand. Indian Journal of Natural Products and Resources (IJNPR), 11(1), 66–72.

82. Benhmimou, A., Ibriz, M., Douaik, A., Lage, M., Faïz, C.A., Chaouqi, S. et al. (2018). Effect of NPK fertilization on the growth, yield, quality and mineral nutrition of new sweet plant in Morocco (Stevia rebaudiana Bertoni). American Journal of Biology and Life Sciences, 6(3), 36–43.

83. Eslami-Firouzabadi, A., Karimi, M., Abbasi-Surki, A., Shafeinia, A., Derikvand-Moghadam, F. (2023). Optimising the rate and stages of application of nitrogen fertiliser for stevia under greenhouse conditions. South African Journal of Plant and Soil, 40(1), 58–63. https://doi.org/10.1080/02571862.2022.2137591.

84. Кузнецова, И. В. (2015). Изучения эффективности органической технологии возделывания стевии (Stevіa rebaudіana Bertonі). Известия Горского государственного аграрного университета, 52(3), 15–20.

85. Warner, R.M. (2022). Influence of environmental parameters, pinching, and ethephon application on growth and branching of potted stevia. HortScience, 57, 81–84. https://doi.org/10.21273/HORTSCI16241-21.

86. Ермаков, Е. И., Кочетов, А. А. (1996). Особенности роста и развития растений стевии при разных световых режимах в регулируемых условиях. Доклады Российской академии сельскохозяйственных наук, 1, 8–9.

87. Sharakshane, A. (2018). An easy estimate of the PFDD for a plant illuminated with white LEDs: 1000 lx = 15 μmol/s/m2. BioRxiv, Article 289280. https://doi.org/10.1101/289280.

88. Romero-Figueroa, J. C., Gutiérrez-Castorena, M. del C., Peña-Valdivia, C. B., Rodríguez-Mendoza, M. de las N., Escalante-Estrada, J.A.S., Cueto-Wong, J.A. et al. (2017). Growth dynamics of Stevia cultivated in organic substrates in greenhouse. Revista Fitotecnia Mexicana, 40(3), 341–350.

89. Ruiz-Espinoza, F. H., Murillo-Amador, B., García-Hernández, J. L., Fenech-Larios, L., Rueda-Puente, E. O., Troyo-Diéguez, E. et al. (2010). Field evaluation of the relationship between chlorophyll content in basil leaves and a portable chlorophyll meter (SPAD-502) readings. Journal of Plant Nutrition, 33(3), 423–438. https://doi.org/10.1080/01904160903470463.

90. Uddling, J., Gelang-Alfredsson, J., Piikki, K., Pleijel, H. (2007). Evaluating the relationship between leaf chlorophyll concentration and SPAD-502 chlorophyll meter readings. Photosynthesis Research, 91(1), 37–46. https://doi.org/10.1007/s11120-006-9077-5.

91. Radhamani, R., Kannan, R. Rakkiyappan, P. (2016). Leaf chlorophyll meter readings as an indicator for sugarcane yield under iron deficient typic haplustert. Sugar Tech, 18, 61–66 https://doi.org/10.1007/s12355-014-0363-9.

92. Shibaeva, T. G., Mamaev, A. V. Sherudilo, E. G. (2020). Evaluation of a SPAD-502 plus chlorophyll meter to estimate chlorophyll content in leaves with interveinal chlorosis. Russian Journal of Plant Physiology, 67(4), 690–696. https://doi.org/10.1134/S1021443720040160.

93. Zhu, J., Tremblay, N., Liang, Y. (2012). Comparing SPAD and at LEAF values for chlorophyll assessment in crop species. Canadian Journal of Soil Science, 92(4), 645–648. https://doi.org/10.4141/cjss2011-100.

94. Samsudin, A., Aziz, I. A. (2013). Drying of stevia leaves using laboratory and pilot scale dryers. Journal of Tropical Agriculture and Food Science, 41(1), 137–147.

95. Periche, A., Koutsidis, G., Escriche, I. (2013). Composition of antioxidants and amino acids in stevia leaf infusions. Plant Foods for Human Nutrition, 69(1), 1–7. https://doi.org/10.1007/s11130-013-0398-1.

96. Siddique, A. B., Mizanur Rahman, S. M., Hossain, M. A. (2016). Chemical composition of essential oil by different extraction methods and fatty acid analysis of the leaves of Stevia Rebaudiana Bertoni. Arabian Journal of Chemistry, 9, S1185-S1189. https://doi.org/10.1016/j.arabjc.2012.01.004.

97. Korobko, N. V., Turko, Y. A., Shokun, V. V., Chernyak, E. N., Pokrovskii, L. M., Smetankina, O. N. et al. (2008). GC–MS investigations. II. Lipid composition of Stevia rebaudiana. Chemistry of Natural Compounds, 44(3), 359–360. https://doi.org/10.1007/s10600-008-9061-8.

98. Senila, M. (2024). Recent advances in the determination of major and trace elements in plants using inductively coupled plasma optical emission spectrometry. Molecules, 29(13), Article 3169. https://doi.org/10.3390/molecules29133169.

99. Yener, I. (2019). Trace element analysis in some plants species by inductively coupled plasma optical emission spectrometry (ICP-OES). Journal of the Institute of Science and Technology, 9(3), 1492–1502. https://doi.org/10.21597/jist.517739.

100. Hajar, E. W. I., Sulaiman, A. Z. B., Sakinah, A. M. M. (2014). Assessment of heavy metals tolerance in leaves, stems and flowers of Stevia Rebaudiana plant. Procedia Environmental Sciences, 20, 386–393. https://doi.org/10.1016/j.proenv.2014.03.049.

101. Лоскутов, С. И., Пухальский, Я. В., Воробьев, Н. И., Якубовская, А. И., Каменева, И. А., Ситнов, В. Ю. (2024). Нейросетевой анализ влияния органомикробных биопрепаратов на интенсивность массонакопительных и биохимических процессов в бархатцах. Агрохимический вестник, 5, 63–70.

102. Chumthong, B., Seesanong, S., Detpiratmongkol, S. (2023). Influence of ethephon spraying on the growth and yield of Stevia (Stevia rebaudiana Bertoni.). International Journal of Agricultural Technology, 19(3), 921–930.

103. Qiu, X.-M, Sun, Y.-Y., Ye, X.-Y., Li Z.-G. (2020). Signaling role of glutamate in plants. Frontiers in Plant Science, 10, Article 1743. https://doi.org/10.3389/fpls.2019.01743.

104. Liao, H.-S., Chung, Y.-H., Hsieh, M.-H. (2022). Glutamate: A multifunctional amino acid in plants. Plant Science, 318, Article 111238. https://doi.org/10.1016/j.plantsci.2022.111238.

105. Svietlova, N., Zhyr, L., Reichelt, M., Grabe, V., Mithöfer, A. (2024). Glutamine as sole nitrogen source prevents induction of nitrate transporter gene NRT2.4 and affects amino acid metabolism in Arabidopsis. Frontiers in Plant Science, 15, Article 1369543. https://doi.org/10.3389/fpls.2024.1369543.

106. Liao, H.-S., Lee, K.-T., Chung, Y.-H., Chen, S.-Z., Hung, Y.-J., Hsieh, M.-H. (2024). Glutamine induces lateral root initiation, stress responses, and disease resistance in Arabidopsis. Plant Physiology, 195(3), 2289–2308. https://doi.org/10.1093/plphys/kiae144.

107. Hayat, S., Hayat, Q., Alyemeni, M. N., Wani, A.S., Pichtel, J., Ahmad, A. (2012). Role of proline under changing environments: A review. Plant Signaling and Behavior, 7(11), 1456–1466. https://doi.org/10.4161/psb.21949.

108. Murakami, H., Shimbo, K., Inoue, Y., Takino, Y., Kobayashi, H. (2012). Importance of amino acid composition to improve skin collagen protein synthesis rates in UV-irradiated mice. Amino Acids, 42(6), 2481–2489. https://doi.org/10.1007/s00726-011-1059-z.

109. Karna, E., Miltyk, W., Wołczyński, S., Pałka, J. A. (2001). The potential mechanism for glutamine-induced collagen biosynthesis in cultured human skin fibroblasts. Comparative Biochemistry and Physiology Part B: Biochemistry and Molecular Biology, 130(1), 23–32. https://doi.org/10.1016/s1096-4959(01)00400-6.

110. Albaugh, V. L., Mukherjee, K., Barbul, A. (2017). Proline precursors and collagen synthesis: Biochemical challenges of nutrient supplementation and wound healing. The Journal of Nutrition, 147(11), 2011–2017. https://doi.org/10.3945/jn.117.256404.

111. Ros, R., Muñoz-Bertomeu, J., Krueger, S. (2014). Serine in plants: Biosynthesis, metabolism, and functions. Trends in Plant Science, 19(9), 564–569. https://doi.org/10.1016/j.tplants.2014.06.003.

112. Li, Y., Li, S., Du, R., Wang, J., Li, H., Xie, D. et al (2021). Isoleucine enhances plant resistance against botrytis cinerea via jasmonate signaling pathway. Frontiers in Plant Science, 12, Article 628328. https://doi.org/10.3389/fpls.2021.628328.

113. Montes-Palmeros, M., Alvarado-Orea, I. V., Pavón-Orozco, P., García-López, E., Huerta-Heredia, A. A. (2016). Steviol glucosides production in micropropaged seedlings of Stevia rebaudiana elicited with methyl jasmonate. Mexican Journal of Biotechnology,1(1), 113–119.

114. Moharramnejad, S., Azam, A. T., Panahandeh, J., Dehghanian, Z., Ashraf, M. (2019). Effect of methyl jasmonate and salicylic acid on in vitro growth, stevioside production, and oxidative defense system in Stevia rebaudiana. Sugar Tech, 21(6), 1031–1038. https://doi.org/10.1007/s12355-019-00727-8.

115. Yu, H., Zhang, F., Wang, G., Liu, Y., Liu, D. (2013). Partial deficiency of isoleucine impairs root development and alters transcript levels of the genes involved in branched-chain amino acid and glucosinolate metabolism in Arabidopsis. Journal of Experimental Botany, 64(2), 599–612. https://doi.org/10.1093/jxb/ers352.

116. Rouhier, K. A., Perrett, M. E., Goldfarb, M. H., Reinhart, P. E., Wilczewski-Shirai, K. C., Raymond-Schmidt, L. et al. (2019). Isoleucine serves as a precursor for the synthesis of β-alanine in plants. The FASEB Journal, 33(S1), Article 486 https://doi.org/10.1096/fasebj.2019.33.1_supplement.486.10.

117. Parthasarathy, A., Savka, M. A., Hudson, A. O. (2019). The synthesis and role of β-alanine in plants. Frontiers in Plant Science, 10, Article 921. https://doi.org/10.3389/fpls.2019.00921.

118. Siddique, A. B., Rahman, S. M. M., Hossain, M. A. (2016). Chemical composition of essential oil by different extraction methods and fatty acid analysis of the leaves of Stevia rebaudiana Bertoni. Arabian Journal of Chemistry, 9, S1185-S1189. https://doi.org/10.1016/j.arabjc.2012.01.004.

119. Oepen, K., Ozbek, H., Schuffler, A., Liermann, J. C., Thines, E., Schneider, D. (2021). Myristic acid inhibits the activity of the bacterial ABC transporter Bmr A. International Journal of Molecular Sciences, 22(24), Article 13565. https://doi.org/10.3390/ijms222413565

120. Rioux, V., Pédrono, F., Legrand, P. (2011). Regulation of mammalian desaturases by myristic acid: N-terminal myristoylation and other modulations. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) — Molecular and Cell Biology of Lipids, 1811(1), 1–8. https://doi.org/10.1016/j.bbalip.2010.09.005.

121. Javid, S., Ather, H., Hani, U., Siddiqua, A., Asif Ansari, S. M., Shanmugarajan, D. et al. (2023). Discovery of novel myristic acid derivatives as N-myristoyltransferase inhibitors: Design, synthesis, analysis, computational studies and antifungal activity. Antibiotics, 12(7), Article 1167. https://doi.org/10.3390/antibiotics12071167.

122. Chen, J., Liu, H. (2020). Nutritional indices for assessing fatty acids: A minireview. International Journal of Molecular Sciences, 21(16), Article 5695. https://doi.org/10.3390/ijms21165695.

123. Берзегова, А. А. (2007). Значение липидов для организма человека. Новые технологии, 4, 40–42.

124. Simopoulos, A. P. (2002). The importance of the ratio of omega-6/omega-3 essential fatty acids. Biomedicine and Pharmacotherapy, 56(8), 365–379. https://doi.org/10.1016/s0753-3322(02)00253-6.

125. Simopoulos, A. P. (1991). Omega-3 fatty acids in health and disease and in growth and development. The American Journal of Clinical Nutrition, 54(3), 438–463. https://doi.org/10.1093/ajcn/54.3.438.

126. Yashodhara, B. M., Umakanth, S., Pappachan, J. M., Bhat, S. K., Kamath, R., Choo, B. H. (2009). Omega-3 fatty acids: A comprehensive review of their role in health and disease. Postgraduate Medical Journal, 85(1000), 84–90. https://doi.org/10.1136/pgmj.2008.073338.

127. EFSA (2017). Dietary Reference Values for nutrients: Summary report. EFSA Supporting Publication, 14(12), Article e15121E. https://doi.org/10.2903/sp.efsa.2017.e15121.

128. WHO, FAO. (2004). Vitamin and Mineral Requirements in Human Nutrition. Geneva, 2004.

129. EFSA. (2006). Tolerable Upper Intake Levels for Vitamins and Minerals. Parma, 2006.

130. EFSA (2016). Dietary Reference Values for potassium. EFSA Journal, 14(10), Article e04592. https://doi.org/10.2903/j.efsa.2016.4592.

131. EFSA (2013). Scientific Opinion on Dietary Reference Values for manganese. EFSA Journal, 11(11), Article 3419. https://doi.org/10.2903/j.efsa.2013.3419.

132. Seth, K., Aery, N. C. (2014). Effect of boron on the contents of chlorophyll, carotenoid, phenol and soluble leaf protein in mung bean, Vigna radiata (L.) Wilczek. Proceedings of the National Academy of Sciences, India Section B: Biological Sciences, 84(3), 713–719. https://doi.org/10.1007/s40011-013-0293-4.

133. Singh, P., Dwivedi, P. (2019). Micronutrients zinc and boron enhance stevioside content in Stevia rebaudiana plants while maintaining genetic fidelity. Industrial Crops and Products, 140(2), Article 111646. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2019.1116.

134. Aghighi Shahverdi, M., Omidi, H., Damalas, C. A. (2020). Foliar fertilization with micronutrients improves Stevia rebaudiana tolerance to salinity stress by improving root characteristics. Brazilian Journal of Botany, 43(1), 55–65. https://doi.org/10.1007/s40415-020-00588-6.

135. Pushnik, J. C., Miller, G. W., Manwaring, J. H. (1984). The role of iron in higher plant chlorophyll biosynthesis, maintenance and chloroplast biogenesis. Journal of Plant Nutrition, 7(1–5), 733–758. https://doi.org/10.1080/01904168409363238.

136. Lankarani, S. M. J., Karimi, J., Rezaei, A. (2024). Impact of zinc oxide nanoparticles and iron on Stevia rebaudiana Bertoni growth, nutrient uptake, and bioactive compounds under in vitro conditions. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 159(1), Article 18. https://doi.org/10.1007/s11240-024-02871-w.

137. Khan, M. A., Ali, A., Mohammad, S., Ali, H., Khan, T., Mashwani, Z.-R. et al. (2020). Iron nano modulated growth and biosynthesis of steviol glycosides in Stevia rebaudiana. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 143(1), 121–130. https://doi.org/10.1007/s11240-020-01902-6.

138. Schmidt, S. B., Husted, S. (2019). The biochemical properties of manganese in plants. Plants, 8(10), Article 381. https://doi.org/10.3390/plants8100381.

139. Alejandro, S., Höller, S., Meier, B., Peiter, E. (2020). Manganese in plants: From acquisition to subcellular allocation. Frontiers in Plant Science, 11, Article 300. https://doi.org/10.3389/fpls.2020.00300.


Рецензия

Для цитирования:


Пухальский Я.В., Лоскутов С.И., Воробьев Н.И., Питти Х.К., Глушаков Р.И., Ситнов В.Ю. Оценка влияния экстракта зоогумуса на биохимию и вегетативный рост стевии медовой (Stevia Rebaudiana). Пищевые системы. 2026;9(2):316-328. https://doi.org/10.21323/2618-9771-2026-9-2-316-328

For citation:


Puhalsky J.V., Loskutov S.I., Vorobyov N.I., Pitti J.C., Glushakov R.I., Sitnov V.Yu. Evaluation of the influence of zoohumus extract on biochemistry and vegetative growth of Stevia Rebaudiana. Food systems. 2026;9(2):316-328. (In Russ.) https://doi.org/10.21323/2618-9771-2026-9-2-316-328

Просмотров: 51

JATS XML


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2618-9771 (Print)
ISSN 2618-7272 (Online)