Ферментативный синтез растительных белковых концентратов и их функциональные свойства
https://doi.org/10.21323/2618-9771-2026-9-1-44-53
Аннотация
Функциональные свойства растительных белковых концентратов часто не отвечают требованиям, предъявляемым к ним специалистами пищевой промышленности при разработке рецептур белоксодержащих продуктов питания (мясные, кондитерские и т.д.). В данном исследовании с целью модификации функциональных свойств коммерческих белковых препаратов разработаны оптимальные/рациональные параметры биосинтеза новых гороховых, подсолнечных и пшеничных концентратов с ферментами тирозиназой и микробной трансглютаминазой, относящихся, соответственно, к классу оксидоредуктаз и трансфераз. При этом установлены закономерности влияния концентрации ферментов, продолжительности реакций и гидромодуля на массовую долю аминного азота и растворимого белка в среде как эффективных показателей контроля хода реакции в среде. У нового белкового концентрата, полученного из сухой пшеничной клейковины, синтезированного при последовательном внесении обоих видов ферментов, по сравнению с контрольным образцом, на 44% повысилась водосвязывающая способность и почти в 2 раза жиросвязывающая способность. У горохового и подсолнечного концентратов, приготовленных с раздельным внесением ферментов, на 24–56% стала выше водосвязывающая способность, в 2,3–2,4 раза — пенообразующая способность и в 1,6–5,7 раза более высокая стабильность пены. У подсолнечного концентрата увеличилась жиросвязывающая и жироэмульгирующая способность, по сравнению с исходным концентратом. Результаты влияния тирозиназы и микробной трансглютаминазы на функциональные свойства белковых концентратов, несмотря на различный принцип их действия, были, практически, одинаковые. Следовательно, для модификации свойств, взамен трансглютаминазы, с учетом выявленных параметров ее действия на гороховые, подсолнечные белки и пшеничную клейковину, для производства пищевых изделий целесообразно использовать и фермент тирозиназу.
Ключевые слова
Об авторах
В. В. КолпаковаРоссия
Колпакова Валентина Васильевна — доктор технических наук, профессор, заведующий отделом биотехнологии комплексной переработки крахмалсодержащего сырья, главный научный сотрудник
140051, Московская область, Люберцы, п. Красково, ул. Некрасова, 11
И. С. Гайворонская
Россия
Гайворонская Ирина Сергеевна — соискатель, отдел биотехнологии комплексной переработки крахмалсодержащего сырья
140051, Московская область, Люберцы, п. Красково, ул. Некрасова, 11
В. А. Гулакова
Россия
Гулакова Валентина Андреевна — научный сотрудник, отдел биотехнологии комплексной переработки крахмалсодержащего сырья
140051, Московская область, Люберцы, п. Красково, ул. Некрасова, 11
Г. В. Семенов
Россия
Семенов Геннадий Вячеславович — доктор технических наук, профессор, старший научный сотрудник, лаборатория композитных материалов
125080, Москва, Волоколамское шоссе, 11
Н. В. Цурикова
Россия
Цурикова Нина Васильевна — кандидат технических наук, заведующая лабораторией биотехнологии новых продуцентов гидролитических ферментов
111033, Москва, Самокатная ул., 4-Б
А. П. Синицын
Россия
Синицын Аркадий Пантелеймонович — доктор химических наук, профессор, заведующий лабораторией биохимии ферментов; заведующий лабораторией физико — химии ферментативной трансформации полимеров, кафедра химической энзимологии
111033, Москва, Ленинский проспект, 33, кор. 2
119991, Москва, Ленинские горы, 1, строение 3
Список литературы
1. Goncharova, N., Merzlyakova, N. (2021). Food shortages and hunger as a global problem. Food Science and Technology, 42(2), Article 70621. https://doi.org/10.1590/Fst.70621
2. Нечаев, А. П., Кочеткова, А. А., Колпакова, В. В., Траубенберг, С. Е., Витол, И. С., Кобелева, И. Б. и др. (2024). Пищевая химия. Санкт-Петербург: ГИОРД, 2024.
3. Williams, R. A. (2021). Opportunities and сhallenges for the introduction of new food proteins. Annual Review of Food Science and Technology, 12, 75–91. https://doi.org/10.1146/annurev-food‑061220-012838
4. Kołodziejczak, K., Onopiuk, A., Szpicer, A., Półtorak, A. (2021). Meat analogues in the perspective of recent scientific research: A review. Foods, 11(1), Article 105. https://doi.org/10.3390/foods11010105
5. Heertje, I. (2014). Structure and function of food products: A review. Food Structure, 1(1), 3–23. https://doi.org/10.1016/j.foostr.2013.06.001
6. Колпакова, В. В., Бызов, В. А. (2024). Функциональные характеристики и молекулярно-структурная модификация растительных белков. Обзор. Пищевые системы, 7(3), 324–335. https://doi.org/10.21323/2618-9771-2024-7-3-324-335
7. WHO/FAO. (2018). Driving commitment for nutrition within the UN Decade of Action on Nutrition: Policy brief. World Health Organization and Food and Agriculture Organization of the United Nations, 2018.
8. Лисицын, А. Б., Захаров, А. Н., Искаков, М. Х., Алиев, М. С. (2014). Современное состояние российского рынка сои и соевых белков. Все о мясе, 4, 20–23.
9. Нечаев, А.П., Дубцова, Г.Н., Колпакова, В.В. (1995). Белки пшеницы. Технология получения и применения (состояние, проблемы, пути развития). Известия высших учебных заведений. Пищевая технология, 1–2(224–225), 28–30.
10. Day, L. (2011). Wheat gluten: Production, properties and application. Chapter in a book: Handbook of Food Proteins. Sawston, Cambridge: Woodhead Publishing, 2011. http://doi.org/10.1533/9780857093639.267
11. Kolpakova, V. V., Lukin, N. D., Gaivoronskaya, I. S. (2018). Interrelation of functional properties of protein products from wheat with the composition and physicochemical characteristics of their proteins. Chapter in a book: Global Wheat Production. London: IntechOpen, 2018. http://doi.org/10.5772/intechopen.75803
12. Колпакова, В. В., Куликов, Д. С., Уланова, Р. В., Чумикина, Л. В. (2021). Пищевые и кормовые белковые препараты из гороха и нута: производство, свойства, применение. Техника и технология пищевых производств, 51(2), 333–348. http://doi.org/10.21603/2074-9414-2021-2-333-348
13. Gao, Z., Shen, P., Lan, Y., Cui, L., Ohm, J.-B, Chen, B, Rao, J. (2020). Effect of alkaline extraction pH on structure properties, solubility, and beany flavor of yellow pea protein isolate. Food Research International, 131(4), Article 09045. http://doi.org/10.1016/j.foodres.2020.109045
14. Shen, Y., Hong, S., Li, Y. (2022). Pea protein composition, functionality, modification, and food applications: A review. Advances in Food and Nutrition Research, 101, 71–127. http://doi.org/10.1016/bs.afnr.2022.02.002
15. Patil, N. (2023). Chickpea protein: A comprehensive review on nutritional properties, processing, functionality, applications, and sustainable impact. The Pharma Innovation Journal, 12(7), 3424–3434.
16. Funke, M., Loeffler, M., Winkelmeyer, C., Krayer, M., Boom, R., Weiss, J. (2022). Emulsifying properties of lentil protein preparations obtained by dry fractionation. European Food Research and Technology, 248, 381–391. https://doi.org/10.1007/s00217-021-03883‑y
17. Vogelsang-O’Dwyer, M., Petersen, I. L., Joehnke, M.S, Sørensen, J. C., Bez, J., Detzel, A. et al. (2020). Comparison of faba bean protein ingredients produced using dry fractionation and isoelectric precipitation: Techno-functional, nutritional and environmental performance. Foods, 9(3), Article 322. https://doi.org/10.3390/foods9030322
18. Колпакова, В. В., Фан, Ч. К., Гайворонская, И. С., Чумикина, Л. В. (2023). Свойства и структурные особенности белков нативных и модифицированных концентратов из белого и коричневого риса. Пищевые системы, 6(3), 317–328. https://doi.org/10.21323/2618-9771-2023-6-3-317-328
19. Östbring, K., Malmqvist, E., Nilsson, K., Rosenlind, I., Rayner, M. (2020). The effects of oil extraction methods on recovery yield and emulsifying properties of proteins from rapeseed meal and press cake. Foods, 9(1), Article 19. https://doi.org/10.3390/foods9010019
20. Dabbour, M., He, R., Ma, H., Musa, A. (2018). Optimization of ultrasound assisted extraction of protein from sunflower meal and its physicochemical and functional properties. Journal of Food Process Engineering, 41(5), Article e12799. https://doi.org/10.1111/jfpe.12799
21. Mondor, M., Hernández-Álvarez, A. J. (2022). Processing technologies to produce plant protein concentrates and isolates. Chapter in a book: Plant Protein Foods. London-Berlin: Springer Nature, 2022. https://doi.org/10.1007/978-3-030-91206-2_3
22. Joshi, V.K., Kumar, S. (2015). Meat analogues: Plant based alternatives to meat products — A review. International Journal of Food and Fermentation Technology, 5(2), 107–119. https://doi.org/10.5958/2277-9396.2016.00001.5
23. Kumar, P., Sharma, B., Kumar, R.R., Kumar, A. (2012). Optimization of the level of wheat gluten in analogue meat nuggets. Indian Journal of Veterinary Research, 21(1), 54–59.
24. Onwezen, M. C., Bouwman, E. P., Reinders, M. J., Dagevos, H. (2021). A systematic review on consumer acceptance of alternative proteins: Pulses, algae, insects, plant-based meat alternatives, and cultured meat. Appetite, 159, Article 105058. https://doi.org/10.1016/J.Appet.2020.105058
25. Xia, W., Botma, T.E., Sagis, L.M.C., Yang, J. (2022). Selective proteolysis of β-conglycinin as a tool to increase air-water interface and foam stabilising properties of soy proteins. Food Hydrocolloids, 130(3), Article 107726. https://doi.org/10.1016/j.foodhyd.2022.107726
26. Yolandani, Y., Ma, H., Li, Y., Liu, D., Zhou, H., Liu, X. et al. (2023). Ultrasoundassisted limited enzymatic hydrolysis of high concentrated soy protein isolate: Alterations on the functional properties and its relation with hydrophobicity and molecular weight. Ultrasonics Sonochemistry, 95, Article 106414. https://doi.org/10.1016/j.ultsonch.2023.106414
27. Di, A., Li, L. (2020). The effect of limited proteolysis by trypsin on the formation of soy protein isolate nanofibrils. Journal of Chemistry, 4–5, Article 185037. https://doi.org/10.1155/2020/8185037
28. Kolpakova, V. V., Chumikina, L. V., Arabova, L. I., Lukin, D. N, Topunov, А. F, Тitov, Е. I. (2016). Functional technological properties and electrophoretic composition of modified wheat gluten. Foods and Raw Materials, 4(2), 48–57. https://doi.org/10.21179/2308-4057-2016-2-48-57
29. Pourmohammadi, K., Elahe, A. (2021). Hydrolytic enzymes and their directly and indirectly effects on gluten and dough properties: An extensive review. Food Science and Nutrition, 9(12), 3988–4006. https://doi.org/10.1002/fsn3.2344
30. Kolpakova, V. V., Chumikina, L. V., Vasil’ev, A. V., Arabova, L. I., Topunov, A. F. (2014). Wheat gluten proteolysis by enzyme preparations of directional action. International Journal of Agronomy and Agricultural Research, 5(2), 72–86.
31. Merz, M., Kettner, L., Langolf, E., Appel, D., Blank, I., Stressler, T. et al. (2016). Production of wheat gluten hydrolysates with reduced antigenicity employing enzymatic hydrolysis combined with downstream unit operations. Journal of the Science of Food and Agriculture, 96(10), 3358–3364. https://doi.org/10.1002/jsfa.7515
32. Mika, M., Wikiera, A. (2024). Enzymatic hydrolysis as an effective method for obtaining wheat gluten hydrolysates combining beneficial functional properties with health-promoting potential. Molecules, 29(18), Article 4407. https://doi.org/10.3390/molecules29184407
33. Kieliszek, M., Misiewicz, A. (2014). Microbial transglutaminase and its application in the food industry. A review. Folia Microbiologica, 59(3), 241–250. https://doi.org/10.1007/s12223-013-0287‑x
34. Akbari, M., Razavi, S.H., Kieliszek, M. (2021). Recent advances in microbial transglutaminase biosynthesis and its application in the food industry. Trends in Food Science and Technology, 110, 458–469. https://doi.org/10.1016/j.tifs.2021.02.036
35. Kolotylo, V., Piwowarek, K., Kieliszek, M. (2023). Microbiological transglutaminase: Biotechnological application in the food industry. Open Life Science, 18(1), Article 20220737. https://doi.org/10.1515/biol‑2022-0737
36. Sorapukdee, S., Tangwatcharin, P. (2018). Quality of steak restructured from beef trimmings containing microbial transglutaminase and impacted by freezing and grading by fat level. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences, 31(1), 129–137. https://doi.org/10.5713/ajas.17.0170
37. Lesiow, T., Rentfrow, G. K., Xiong, Y. L. (2017). Polyphosphate and myofibrillar protein extract promote transglutaminase-mediated enhancements of rheological and textural properties of PSE pork meat batters. Meat Science, 128, 40–46. https://doi.org/10.1016/j.meatsci.2017.02.002
38. Santhi, D., Kalaikannan, A., Malairaj, P., Prubhu, A, (2017). Application of microbial transglutaminase in meat foods: A review. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 57(10), 2071–2076. https://doi.org/10.1080/10408398.2014.945990
39. Carballo, J., Ayo, J., Colmenero, F.J. (2006). Microbial transglutaminase and caseinate as cold set binders: Influence of meat species and chilling storage. LWT — Food Science and Technology, 39(6), 692–699. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2005.03.020
40. Abou-Soliman, N. H. I., Sakr, S. S., Awad, S. (2017). Physico-chemical, microstructural and rheological properties of camel-milk yogurt as enhanced by microbial transglutaminase. Journal of Food Science and Technology, 54(6), 1616–1627. https://doi.org/10.1007/s13197-017-2593-9
41. Gharibzahedi, S. M. T., Koubaa, M., Barba, F. J., Greiner, R., George, S., Roohinejad, S. (2018). Recent advances in the application of microbial transglutaminase cross linking in cheese and ice cream products: A review. International Journal of Biological Macromolecules, 107(Pt B), 2364–2374. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2017.10.115
42. D’Alessandro, A. G., Martemucci, G., Faccia, M. (2021). Effects of microbial transglutaminase levels on donkey cheese production. Journal of Dairy Research, 88(3), 351–356. https://doi.org/10.1017/S0022029921000601
43. Darnay, L., Miklós, G., Lőrincz, A., Szakmár, K., Pásztor-Huszár, K., Laczay, P. (2022). Possible inhibitory effect of microbial transglutaminase on the formation of biogenic amines during Trappist cheese ripening. Food Additives and Contaminans: Part A, 39(3), 580–587. https://doi.org/10.1080/19440049.2021.2005831
44. Palmeira, K. R., Rodrigues, B. L., Gaze, L. V., Freitas, M. Q., Teixeira, C. E., Marsico, E. T. et al. (2014). Use of transglutaminase, soybean waste and salt replacement in the elaboration of trout (Oncorhynchus mykiss) meatball. International Food Research Journal, 21(4), 1597–1602.
45. Yuan, F., Lv, L., Li, Z., Mi, N., Chen, H., Lin, H. (2017). Effect of transglutaminasecatalyzed glycosylation on the allergenicity and conformational structure of shrimp (Metapenaeus ensis) tropomyosin. Food Chemistry, 219, 215–222. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2016.09.139
46. Bellido, G., Hatcher, D. W. (2011). Effects of a cross-linking enzyme on the protein composition, mechanical properties, and microstructure of Chinese-style noodles. Food Chemistry, 125(3), 813–822. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2010.08.008
47. Niu, M., Hou, G. G., Kindelspire, J., Krishnan, P., Zhao, S. (2017). Microstructural, textural, and sensory properties of whole-wheat noodle modified by enzymes and emulsifiers. Food Chemistry, 223, 16–24. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2016.12.021
48. Ogilvie, O., Roberts, S., Sutton, K., Larsen, N., Gerrard, J., Domigan, L. (2020). The use of microbial transglutaminase in a bread system: A study of gluten protein structure, deamidation state and protein digestion. Food Chemistry, 340. Article 127903. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2020.127903
49. Escamilla-García, M., Ríos-Romo, R. A., Melgarejo-Mancilla, A., Díaz-Ramírez, M., Hernández-Hernández, H. M., Amaro-Reyes, A. et al. (2020). Rheological and antimicrobial properties of chitosan and quinoa protein filmogenic suspensions with thyme and rosemary essential oils. Foods, 9(11), Article 1616. https://doi.org/10.3390/foods9111616
50. Uresti, R.M., Téllez-Luis, S.J., Ramírez, J.A., Vázquez, M. (2004). Use of dairy products and microbial transglutaminase to obtain low-salt fish products from filleting waste from silver carp (Hypophtalmichtis molitrix). Food Chemistry, 86(2), 257–262. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2003.09.033
51. Martínez, B., Miranda, J.M., Franco, C.M., Cepeda, A., Vázquez, M. (2011). Evaluation of transglutaminase and caseinate for a novel formulation of beef patties enriched in healthier lipid and dietary fiber. LWT — Food Science and Technology, 44(4), 949–956. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2010.11.026
52. Giosafatto, C. V. L., Al-Asmar, A., Mariniello, L. (2018). Transglutaminase protein substrates of food interest. Chapter in a book: Enzymes in food technology. Singapore: Springer, 2018. https://doi.org/10.1007/978-981-13-1933-4_15
53. Jaros, D., Heidig, C., Rohm, H. (2007). Enzymatic modification through microbial transglutaminase enhances the viscosity of stirred yogurt. Journal of Texture Studies, 38(2), 179–198. https://doi.org/10.1111/j.1745-4603.2007.00093.x
54. Fenoll, L. G., Rodríguez-López, J. N., García-Sevilla, F., García-Ruiz, P. A., Varón, R., García-Cánovas, F. et al. (2001). Analysis and interpretation of the action mechanism of mushroom tyrosinase on monophenols and diphenols generating highly unstable o-quinones. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) — Protein Structure and Molecular Enzymology, 1548(1), 1–22. https://doi.org/10.1016/s0167-4838(01)00207-2
55. Ito, S., Sugumaran, M., Wakamatsu, K. (2020). Chemical reactivities of orthoquinones produced in living organisms: Fate of quinonoid products formed by tyrosinase and phenoloxidase action on phenols and catechols. International Journal of Molecular Sciences, 21(17), Article 6080. https://doi.org/10.3390/ijms21176080
56. Kumar, C. M., Sathisha, U.V., Dharmesh, S., Rao, A.G.A., Singh, S.A. (2011). Interaction of sesamol (3,4‑methylenedioxyphenol) with tyrosinase and its effect on melanin synthesis. Biochimie, 93(3), 562–569. https://doi.org/10.1016/j.biochi.2010.11.014
57. Arias, S., Amini, S., Horsch, J., Pretzler, M., Rompel, A., Melnyk, I. et al. (2020). Toward artificial mussel-glue proteins: Differentiating sequence modules for adhesion and switchable cohesion. Angewandte Chemie, International Edition, 59(42), 18495–18499. https://doi.org/10.1002/anie.202008515
58. Krüger, J. M., Börner, H. G. (2021). Accessing the next Generation of synthetic mussel-glue polymers via mussel-inspired polymerization. Angewandte Chemie, International Edition, 60(12), 6408–6413. https://doi.org/10.1002/anie.202015833
59. Fernandes, M. S., Kerkar, S. (2017). Microorganisms as a source of tyrosinase inhibitors: A review. Annals of Microbiology, 67, 343–358. https://doi.org/10.1007/s13213-017-1261-7
60. Virginia, B.A., Apetrei, C. (2023). Tyrosinase immobilization strategies for the development of electrochemical biosensors — A review. Nanomaterials, 13(4), Article 760. https://doi.org/10.3390/nano13040760
61. Семенов, Г. В., Краснова, И. С. (2021). Сублимационная сушка. М.: ДеЛи, 2021.
62. Ванин, С. В., Колпакова, В. В. (2007). Функциональные свойства сухой пшеничной клейковины разного качества. Известия высших учебных заведений. Пищевая технология, 1(296), 21–24.
63. Колпакова, В. В., Крикунова, Л. Н., Кононенко, В. В. (2001). Исследование возможности получения белковых препаратов из дифференцированных фракций зерна ржи и ячменя. Известия высших учебных заведений. Пищевая технология, 5–6(264–265), 35–39.
64. Андреев, Н. Р., Колпакова, В. В., Гольдштейн, В. Г. (2018). К вопросу глубокой переработки зерна тритикале. Пищевая промышленность, 9, 30–33.
65. Buchert, J., Ercili-Cura, D.E., Ma, H., Gasparetti, C., Monogioudi, E., Faccioet, G. al. (2010). Crosslinking food proteins for improved functionality. Annual Review of Food Science and Technology, 1(1), 113–138. https://doi.org/10.1146/annurev.food.080708.100841
66. Zimoch-Korzycka, A., Krawczyk, A., Król-Kilińska, Ż., Kulig, D., Bobak, Ł., Jarmoluk, A. (2024). Influence of мicrobial transglutaminase on the formation of physico-chemical properties of meat analogs. Foods, 13(24), Article 4085. https://doi.org/10.3390/foods13244085
67. Zo, S. M., Sood, A., Won, S. Y., Choi, S. M, Han, S. S. (2025). Structuring the future of cultured meat: Hybrid gel-based caffolds for edibility and functionality. Gels, 11(8), Article 610. https://doi.org/10.3390/gels11080610
68. Baugreet, S., Kerry, J. P., Brodkorb, A., Gomez, C., Auty, M., Allen P. et al. (2018). Optimisation of plant protein and transglutaminase content in novel beef restructured steaks for older adults by central composite design. Meat Science, 142, 65–77. https://doi.org/10.1016/j.meatsci.2018.03.024
69. Partanen, R., Torkkeli, M., Hellman, M., Permi, P., Serimaa, R., Buchert, J. et al. (2011). Loosening of globular structure under alkaline pH affects accessibility of β-lactoglobulin to tyrosinase-induced oxidation and subsequent cross-linking. Enzyme and Microbial Technology, 49(2), 131–138. https://doi.org/10.1016/j.enzmictec.2011.04.010
70. Madsen, M., Khan, S., Kunstmann, S., Aachmann, F. L., Ipsen, R., Westh, P. et al. (2022). Unaided efficient transglutaminase cross-linking of whey proteins strongly impacts the formation and structure of protein alginate particles. Food Chemistry: Molecular Sciences, 5, Article 100137. https://doi.org/10.1016/j.fochms.2022.100137
71. Nivala, O., Mäkinen, O.E., Kruus, K., Nordlund, E., Ercili-Cura, D. (2017). Structuring colloidal oat and faba bean protein particles via enzymatic modification. Food Chemistry, 231, 87–95. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2017.03.114
72. Marco, C., Pérez, G., Ribotta, P., Rosell, C.M. (2007). Effect of microbial transglutaminase on the protein fractions of rice, pea and their blends. Journal of the Science of Food and Agriculture, 87(14), 2576–2582. https://doi.org/10.1002/jsfa.3006
73. Tang, C. H., Sun, X., Yin, S. W., Ma, C. Y. (2008). Transglutaminase induced crosslinking of vicilin-rich kidney protein isolate: Influence on the functional properties and in vitro digestibility. Food Research International, 41(10), 941–947. https://doi.org/10.1016/j.foodres.2008.07.015
74. Queirós, R.P., Moreira, N., Pinto, C.A., Fidalgo, L.G., Saraiva, J.A., Lopes da Silva, J.A. (2024). Influence of high-pressure processing and microbial transglutaminase on the properties of pea protein isolates. Macromol, 4(2), 213–226. https://doi.org/10.3390/macromol4020011
75. Glusac, J., Isaschar-Ovdat, S., Fishman, A. (2020). Transglutaminase modifies the physical stability and digestibility of chickpea protein-stabilized oil-in-water emulsions. Food Chemistry, 315, Article 126301. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2020.126301
76. de Barros Soares, L.H., Albuquerque, P.M., Assmann, F., Ayub, M.A.Z. (2004). Physical properties of three food proteins treated with transglutaminase. Ciencia Rural, 34(4), 1219–1223. https://doi.org/10.1590/S0103–8478200400040003
Рецензия
Для цитирования:
Колпакова В.В., Гайворонская И.С., Гулакова В.А., Семенов Г.В., Цурикова Н.В., Синицын А.П. Ферментативный синтез растительных белковых концентратов и их функциональные свойства. Пищевые системы. 2026;9(1):44-53. https://doi.org/10.21323/2618-9771-2026-9-1-44-53
For citation:
Kolpakova V.V., Gaivoronskaya I.S., Gulakova V.A., Semenov G.V., Tsurikova N.V., Sinitsyn А.P. Enzymatic synthesis of plant protein concentrates and their functional properties. Food systems. 2026;9(1):44-53. (In Russ.) https://doi.org/10.21323/2618-9771-2026-9-1-44-53
JATS XML
























