Макрофиты экосистемы Балтийского моря как источник сырья для пищевой промышленности

В качестве источников биомассы для комплексной переработки могут быть использованы такие типы ресурсов, как водоросли, водные растения (макрофиты) и их метаболиты. Целью настоящего исследования является анализ видового многообразия, особенностей произрастания и потенциала производства биологически активных веществ макрофитов экосистемы Балтийского моря для использования в пищевой, кормовой и нутрицевтической промышленностях. Макроводоросли Балтийского моря являются перспективным сырьем для получения ценных биологически активных соединений, поскольку они быстро растут, легко размножаются и не требуют специальных площадей или ресурсов для накопления биомассы. Значительные объемы водорослей могут быть обнаружены на берегу (штормовые выбросы), то есть получены без затрат на их добычу. Выделение комплекса биологически активных веществ является наиболее подходящим способом использования их потенциала в качестве антибактериальных, антиоксидантных, антиканцерогенных, противовоспалительных и гепатопротекторных агентов. Многие из прибрежно-водных растений доступны, интенсивно размножаются, образуя значительное количество биомассы, которая не имеет достаточного применения в различных областях промышленности, сельском и лесном хозяйстве, рыбоводстве, медицине и др. Макрофиты имеют высокую пищевую ценность и являются перспективным сырьем для выделения как нутрицевтиков, так и парафармацевтиков. Актуально изучение потенциала ряски для очистки сточных вод, при этом возможна ее переработка в ценную биомассу для корма животных и производства биологически активных веществ. Прибрежно-водное растение рдест обладает антиоксидантной активностью и антибактериальным действием в отношении как грамотрицательной, так и грамположительной микрофлоры. Макрофит телорез широко распространен на территории Калининградской области. Высокое содержание таких макроэлементов, как магний, кальций и фосфор в телорезе способствует повышению качества кормов и эффективности производства животноводческой продукции. В дальнейшем необходимы глубокие исследования перспективных направлений переработки биомассы водных растений с целью получения биологически активных веществ для пищевой, кормовой и нутрицевтической промышленности.

1. Maja, M.M., Ayano, S.F. (2021). The impact of population growth on natural resources and farmers’ capacity to adapt to climate change in low-income countries. Earth Systems and Environment, 5, 271–283. https://doi.org/10.1007/s41748-021-00209-6

2. Nawaz, M.A., Azam, A., Bhatti, M.A. (2019). Natural resources depletion and economic growth: Evidence from ASEAN countries. Pakistan Journal of Economic Studies, 2(2), 155–172.

3. Rasoulinezhad, E., Taghizadeh-Hesary, F., Taghizadeh-Hesary, F. (2020). How is mortality affected by fossil fuel consumption, CO 2 emissions and economic factors in CIS region? Energies, 13(9), Article 2255. https://doi.org/10.3390/en13092255

4. Solis, C.A., Mayol, A.P., San Juan, J.G., Ubando, A.T., Culaba, A.B. (2020). Multiobjective optimal synthesis of algal biorefineries toward a sustainable circular bioeconomy. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science, 463, Article 012051. https://doi.org/10.1088/1755–1315/463/1/012051

5. FAO (2023). World Food and Agriculture — Statistical Yearbook. Rome. https://doi.org/10.4060/cc8166en

6. Ubando, A.T., Felix, C.B., Chen, W.-H. (2019). Biorefineries in circular bioeconomy: A comprehensive review. Bioresource Technology, 299, Article 122585. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2019.122585

7. Володина, А.А., Герб, М.А., Зверева, А.Ю., Горлач, А.А. (2022). Макрофиты российской части Калининградского / Вислинского залива (бассейн Балтийского моря). Вестник Балтийского федерального университета им. И. Канта. Серия: Естественные и медицинские науки, 4, 64–77. https://doi.org/10.5922/gikbfu-2022-4-6

8. Tolpeznikaite, E., Bartkevics, V., Ruzauskas, M., Pilkaityte, R., Viskelis, P., Urbonaviciene, D. et al. (2021). Characterization of macro- and microalgae extracts bioactive compounds and micro- and macroelements transition from algae to extract. Foods, 10(9), Article 2226. https://doi.org/10.3390/foods10092226

9. Tolpeznikaite, E., Ruzauskas, M., Pilkaityte, R., Bartkevics, V., Zavistanaviciute, P., Starkute, V. et al. (2021). Influence of fermentation on the characteristics of Baltic Sea macroalgae, including microbial profile and trace element content. Food Control, 129(15), Article 108235. https://doi.org/10.1016/j.foodcont.2021.108235

10. Kulikova, Y., Sukhikh, S., Kalashnikova, O., Chupakhin, E., Ivanova, S., Chubarenko, B. et al. (2022). Assessment of the resource potential of baltic sea macroalgae. Applied Sciences, 12, Article 3599. https://doi.org/10.3390/app12073599

11. Rinne, H., Kostamo, K. (2022). Distribution and species composition of red algal communities in the northern Baltic Sea. Estuarine, Coastal and Shelf Science, 269, Article 107806. https://doi.org/10.1016/j.ecss.2022.107806

12. Matin, M., Koszarska, M., Atanasov, A.G., Król-Szmajda, K., Artur Jó´zwik, A., Stelmasiak A. et al. (2024). Bioactive potential of algae and algae-derived compounds: Focus on anti-inflammatory, antimicrobial, and antioxidant effects. Molecules, 29(19), Article 4695. https://doi.org/10.3390/molecules29194695

13. Čmiková, N., Galovičová, M., Miškeje, M., Borotová, P., Kluz, P., Kačániová, M. (2022). Determination of antioxidant, antimicrobial activity, heavy metals and elements content of seaweed extracts. Plants, 11(11), Article 1493. https://doi.org/10.3390/plants11111493

14. Luhila, Õ., Paalme, T., Tanilas, K., Sarand, I. (2022). Omega-3 fatty acid and B12 vitamin content in Baltic algae. Algal Research, 67, Article 102860. https://doi.org/10.1016/j.algal.2022.102860

15. Balina, K., Ivanovs, K., Romagnoli, F., Blumberga, D. (2020). Comprehensive literature review on valuable compounds and extraction technologies: The Eastern Baltic Sea Seaweeds. Environmental and Climate Technologies, 24(2), 178–195. https://doi.org/10.2478/rtuect-2020-0065

16. Li, C., Tang, T., Du, Y., Jiang, L., Yao, Z., Ning, L. et al. (2023). Ulvan and Ulva oligosaccharides: A systematic review of structure, preparation, biological activities and applications. Bioresources and Bioprocessing, 10, Article 66. https://doi.org/10.1186/s40643-023-00690-z

17. Romero, A.M., Morales, J.J.P., Klose, L., Liese, A. (2023). Enzyme-assisted extraction of Ulvan from the green macroalgae Ulva fenestrate. Molecules, 28(19), Article 6781. https://doi.org/10.3390/molecules28196781

18. Pari, R.F., Uju, U., Hardiningtyas, S.D., Ramadhan, W., Wakabayashi, R., Goto, M. et al. (2025). Ulva seaweed-derived Ulvan: A promising marine polysaccharide as a sustainable resource for biomaterial design. Marine Drugs, 23(2), Article 56. https://doi.org/10.3390/md23020056

19. Flórez-Fernández, N., Rodríguez-Coello, A., Latire, T., Bourgougnon, N., Torres, M.D., Buján, M. et al. (2023). Anti-inflammatory potential of Ulvan. International Journal of Biological Macromolecules, 253(Part 4), Article 126936. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2023.126936

20. Ou, J.-Y., Wei, Y.-J., Liu, F.-F., Huang, C.-H. (2023). Huang anti-allergic effects of Ulva-derived polysaccharides, oligosaccharides and residues in a murine model of food allergy. Heliyon, 9(12), Article e22840. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2023.e22840

21. Khan, N., Sudhakar, K., Mamat, R. (2024). Eco-friendly nutrient from ocean: Exploring Ulva seaweed potential as a sustainable food source. Journal of Agriculture and Food Research, 17, Article 101239. https://doi.org/10.1016/j.jafr.2024.101239

22. Barakat, K.M., Ismail, M.M, Abou El Hassayeb, H.E., El Sersy, N.A., Elshobary, M.E. (2022). Chemical characterization and biological activities of Ulvan extracted from Ulva fasciata (Chlorophyta). Rendiconti Lincei. Scienze Fisiche e Naturali, 33, 829–841. https://doi.org/10.1007/s12210-022-01103-7

23. Li, Y., Ye, H., Wang, T., Wang, P., Liu, R., Li, Y. et al. (2020). Characterization of low molecular weight sulfate Ulva polysaccharide and its protective effect against IBD in mice. Marine Drugs, 18(10), Article 499. https://doi.org/10.3390/md18100499

24. Pereira, L., Critchley, A.T. (2020). The COVID19 novel coronavirus pandemic 2020: Seaweeds to the rescue? Why does substantial, supporting research about the antiviral properties of seaweed polysaccharides seem to go unrecognized by the pharmaceutical community in these desperate times? Journal of Applied Phycology, 32, 1875–1877. https://doi.org/10.1007/s10811-020-02143-y

25. Krangkratok, W., Chantorn, S., Choosuwan, P., Phomkaivon, N., La-ongkham, O., Kosawatpat, P. et al. (2023). Production of prebiotic ulvan-oligosaccharide from the green seaweed Ulva rigida by enzymatic hydrolysis. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, 54, Article 102922. https://doi.org/10.1016/j.bcab.2023.102922

26. Liu, Z., Wang, M., Li, J., Guo, X., Guo, Q., Zhu, B. (2025). Differences in utilization and metabolism of Ulva lactuca polysaccharide by human gut Bacteroides species in the in vitro fermentation. Carbohydrate Polymers, 351, Article 123126. https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2024.123126

27. Yu, S., Sun, Y., Wang, Q., Wu, J., Liu, J. (2023). Extraction of bioactive polysaccharide from Ulva prolifera biomass waste toward potential biomedical application. International Journal of Biological Macromolecules, 235, Article 123852. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2023.123852

28. Feng, Y., An, Z., Chen, H., He, X., Wang, W., Li, X. et al. (2020). Ulva prolifera extract alleviates intestinal oxidative stress via Nrf2 signaling in weaned piglets challenged with hydrogen peroxide. Frontiers in Immunology, 11, Article 599735. https://doi.org/10.3389/fimmu.2020.599735

29. Sun, Y.-Y., Dong, S.-S., Zhang, N.-S., Zhou, J., Long, Z.-K. (2021). Screening and isolation of glyceroglycolipids with antialgal activity from several marine macroalgae. Journal of Applied Phycology, 33(4), 2609–2616. https://doi.org/10.1007/s10811-021-02466-4

30. Sun, Y., Mu, Y., Li, T., Wang, S., Li, Y., Liu, J. et al. (2024). Extraction, isolation and biological activity of two glycolipids from Bangia fusco-purpurea. Marine Drugs, 22(4), Article 144. https://doi.org/10.3390/md22040144

31. Pradhan, B., Patra, S., Nayak, R., Behera, C., Dash, S.R., Nayak, S. et al. (2020). Multifunctional role of fucoidan, sulfated polysaccharides in human health and disease: A journey under the sea in pursuit of potent therapeutic agents. International Journal of Biological Macromolecules, 164, 4263–4278. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2020.09.019

32. Zhu, Y., Wan, L., Li, W., Ni, D., Zhang, W., Yan, X. et al. (2020). Recent advances on 2′-fucosyllactose: Physiological properties, applications, and production approaches. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 1, 2083–2092. https://doi.org/10.1080/10408398.2020.1850413

33. Hans, N., Malik, A., Naik, S. (2021). Antiviral activity of sulfated polysaccharides from marine algae and its application in combating COVID-19: Mini review. Bioresource Technology Reports, 13, Article 100623. https://doi.org/10.1016/j.biteb.2020.100623

34. Barzkar, N., Ivanova, S., Sukhikh, S., Malkov, D., Noskova, S., Babich, O. (2024). Phenolic compounds of brown algae. Food Bioscience, 62, Article 105374. https://doi.org/10.1016/j.fbio.2024.105374

35. Cikoš, A.M., Šubarić, D., Roje, M., Babić, J., Jerković, I., Jokić, S. (2022). Recent advances on macroalgal pigments and their biological activities (2016–2021). Algal Research, 65, Article 102748. https://doi.org/10.1016/j.algal.2022.102748

36. Piotrowicz, Z., Tabisz, L., Leska, B., Messyasz, B., Pankiewicz, R. (2022). Comparison of the antioxidant properties of green macroalgae from diverse European water habitats by use of several semi-quantitative assays. Molecules, 27(12), Article 3812. https://doi.org/10.3390/molecules27123812

37. Freitas, M.V., Pacheco, D., Cotas, J., Mouga, T., Afonso, C., Pereira, L. (2022). Red seaweed pigments from a biotechnological perspective. Phycology, 2(1), 1–29. https://doi.org/10.3390/phycology2010001

38. Punampalam, R., Khoo, K.S., Sit, N.W. (2018). Evaluation of antioxidant properties of phycobiliproteins and phenolic compounds extracted from Bangia atropurpurea. Malaysian Journal of Fundamental and Applied Sciences, 14(2), 289–297. https://doi.org/10.11113/mjfas.v14n2.1096

39. Keramane, B., Sánchez-Camargo, A.P., Montero, L., Laincer, F., Bedjou, F., Ibañez, E. (2013). Pressurized liquid extraction of bioactive extracts with antioxidant and antibacterial activity from green, red and brown Algerian algae. Algal Research, 76, Article 103293. https://doi.org/10.1016/j.algal.2023.103293

40. Saha, M., Rempt, M., Grosser, K., Pohnert, G., Weinberger, F. (2011). Surfaceassociated fucoxanthin mediates settlement of bacterial epiphytes on the rock-weed Fucus Vesiculosus. Biofouling, 27, 423–433. https://doi.org/10.1080/08927014.2011.580841

41. Buedenbender, L., Astone, F.A., Tasdemir, D. (2020). bioactive molecular networking for mapping the antimicrobial constituents of the Baltic brown alga Fucus vesiculosus. Marine Drugs, 18(6), Article 311. https://doi.org/10.3390/md18060311

42. Heavisides, E., Rouger, C., Reichel, A.F., Ulrich, C., Wenzel-Storjohann, A., Sebens, S. et al. (2018). Seasonal variations in the metabolome and bioactivity profile of Fucus vesiculosus extracted by an optimised, pressurised liquid extraction protocol. Marine Drugs, 16(12), Article 503. https://doi.org/10.3390/md16120503

43. Geisen, U., Zenthoefer, M., Peipp, M., Kerber, J., Plenge, J., Managò, A. et al. (2015). Molecular mechanisms by which a Fucus vesiculosus extract mediates cell cycle inhibition and cell death in pancreatic cancer cells. Marine Drugs, 13(7), 4470–4491. https://doi.org/10.3390/md13074470

44. Ullah, H., Gul, B., Khan, H., Zeb, U. (2021). Effect of salt stress on proximate composition of duckweed (Lemna minor L.). Heliyon, 7, Article e07399. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2021.e07399

45. Ullah, H., Gul, B., Khan, H., Akhtar, N., Rehman, K.U., Zeb, U. (2022). Effect of growth medium nitrogen and phosphorus on nutritional composition of Lemna minor (an alternative fish and poultry feed). BMC Plant Biology, 22, Article 214. http://dx.doi.org/10.1186/s12870-022-03600-1

46. Sonta, M., Więcek, J., Szara, E., Rekiel, A., Zalewska, A., Batorska, M. (2023). Quantitative and qualitative traits of duckweed (Lemna minor) produced on growth media with pig slurry. Agronomy, 13(7), Article 1951. https://doi.org/10.3390/agronomy13071951

47. Okwuosa, O.B., Eyo, J.E., Amadi-Ibiam, C.O. (2021). Growth and nutritional profile of duckweed (Lemna minor) cultured with different organic Manure. International Advanced Research Journal in Science, Engineering and Technology, 8(12), 7–11. http://doi.org/10.17148/IARJSET.2021.81202

48. Smith, K.E., Schäfer, M., Lim, M., Robles-Zazueta, C.A., Cowan, L., Fisk, L.D. et al. (2024). Aroma and metabolite profiling in duckweeds: Exploring species and ecotypic variation to enable wider adoption as a food crop. Journal of Agriculture and Food Research, 18, Article 101263. https://doi.org/10.1016/j.jafr.2024.101263

49. Hu, Z., Fang, Y., Yi, Z., Tian, X., Li, J., Jin, Y. et al. (2022). Determining the nutritional value and antioxidant capacity of duckweed (Wolffia arrhiza) under artificial conditions. LWT, 153, Article 112477. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2021.112477

50. Крылова, Ю.В., Курашов, Е.А., Митрукова, Г.Г. (2016). Компонентный состав эфирного масла Рotamogeton perfoliatus L. из Ладожского озера в начале периода плодоношения. Химия растительного сырья, 2, 79–88. https://doi.org/10.14258/jcprm.2016021189

51. Новиченко, О.В. (2016). Биологически активные вещества высших водных растений Potamogeton perfoliatus L. и Zostera noltii: состав, свойства, применение. Вестник Воронежского государственного университета инженерных технологий, 1(67), 137–142. https://doi.org/10.20914/2310-1202-2016-1-137-142

52. Патент 2447675С2. Способ комплексной переработки пресноводной травы рдест пронзеннолистный (Potamogeton perfoliatus) / Мукатова М. Д., Салиева А. Р. Опубл. 20.04.2012.

53. Патент 2496813С2. Способ получения хлорофилла из высших водных растений / Мукатова М. Д., Кабанин М. И., Салиева А. Р. Опубл. 27.10.2013.

54. Wang, S., He, G., Liu, Y., Wang, Y., Ma, Y., Fu, C. et al. (2024). A P1-like MYB transcription factor boosts biosynthesis and transport of C-glycosylated flavones in duckweed. International Journal of Biological Macromolecules, 277(2), 134–138. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2024.134138

55. Ujong, A., Naibaho, J., Ghalamara, S., Tiwari, B.K., Hanon, S., Tiwari, U. (2024). Duckweed: Exploring its farm-to-fork potential for food production and biorefineries. Sustainable Food Technology, 3(1), 54–80. http://doi.org/10.1039/d4fb00288a

56. Prosridee, K., Oonsivilai, R., Tira-aumphon, A., Singthong, J., Oonmetta-aree, J., Oonsivilai, A. (2023). Optimum aquaculture and drying conditions for Wolffia arrhiza (L.) Wimn. Heliyon, 9, Article e19730. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2023.e19730

57. Xu, Y., Ma, S., Huang, M., Peng, M., Bog, M., Sree, S.K. et al. (2015). Species distribution, genetic diversity and barcoding in the duckweed family (Lemnaceae). Hydrobiologia, 743, 75–87. http://doi.org/10.1007/s10750-014-2014-2

58. Kutschera, U., Niklas, K.J. (2014). Darwin-wallace demons: Survival of the fastest in populations of duckweeds and the evolutionary history of an enigmatic group of angiosperms. Plant Biology, 17(s1), 24–32. https://doi.org/10.1111/plb.12171

59. Hemalatha, М., Mohan, S.V. (2022). Duckweed biorefinery — Potential to remediate dairy wastewater in integration with microbial protein production. Bioresource Technology, 346, Article 126499. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2021.126499

60. Министерство сельского хозяйства Калининградской области: животноводство. Электронный ресурс: https://mcx.gov39.ru/zhivotnovodstvo/. Дата обращения 10 марта 2025 г.

61. Калининградская область. Хозяйство. Сельское хозяйство. Электронный ресурс: https://bigenc.ru/c/kaliningradskaia-oblast-khoziaistvo-sel-skoe-khoziaistvo-2d43c7. Дата обращения 10 марта 2025.

62. Патент № 2399298. Способ переработки бурых водорослей / Герасименко Н. И. Опубл. 20.09.2010. Бюл. № 33.

63. Liu, Y., Xu, H., Wang, Y., Tang, X., He, G., Wang, S. et al. (2020). A submerged duckweed mutant with abundant starch accumulation for bioethanol production. Global Change Bioljgy Bioenergy, 12(12), 1078–1091. http://doi.org/10.1111/gcbb.12746

64. Никифоров, Л.А., Белоусов, М.В., Фурса, Н.С. (2011). Изучение аминокислотного состава ряски малой (Lemna minor L.). Бюллетень сибирской медицины, 10(5), 74–77.

65. Duangjarus, N., Chaiworapuek, W., Rachtanapun, C., Ritthiruangdej, P., Charoensiddhi, S. (2022). Antimicrobial and functional properties of duckweed (Wolffia globosa) protein and peptide extracts prepared by ultrasound-assisted extraction. Foods, 11(15), Article 2348. https://doi.org/10.3390/foods11152348

66. Nitiwuttithorn, C., Wongsasulak, S., Vongsawasdi, P., Yongsawatdigul, J. (2024). Effects of alkaline and ultrasonication on duckweed (Wolffia arrhiza) protein extracts’ physicochemical and techno-functional properties. Frontiers in Sustainable Food Systems, 8, Article 1343615. https://doi.org/10.3389/fsufs.2024.1343615

67. Патент 2694969C1. Способ получения пектиновых веществ из ряски Lemna minor / Политаева Н. А., Смятская Ю. А., Опарина А. М. Опубл. 18.07.2019. [Politaeva N. A., Smyatskaya Y. A., Oparina A. M. A method for obtaining pectin substances from Lemna minor duckweed. Patent RF 2694969C1. 2019. (In Russian)]

68. Vu, G., Xiang, X., Zhou, H., McClements, D.J. (2023). Lutein-fortified plant-based egg analogs designed to improve eye health: Formation, characterization, in vitro digestion, and bioaccessibility. Foods, 12(1), Article 2. https://doi.org/10.3390/foods12010002

69. Yahaya, N., Hamdan, N.H., Zabidi, A.R., Mohamad, A.M., Suhaimi, M.L.H., Johari, M.A.A. et al. (2022). Duckweed as a future food: Evidence from metabolite profile, nutritional and microbial analyses. Future Foods, 5, Article 100128. https://doi.org/10.1016/j.fufo.2022.100128

70. On-Nom, N., Promdang, P., Inthachat, W., Kanoongon, P., Sahasakul, Y., Chupeerach, C. et al. (2023). Wolffia globosa-based nutritious snack formulation with high protein and dietary fiber contents. Foods, 12(14), Article 2647. https://doi.org/10.3390/foods12142647

71. Sela, I., Meir, A.Y., Brandis, A., Krajmalnik-Brown, R., Zeibich, L., Chang, D. et al. (2020). Wolffia globosa — Mankai plant-based protein contains bioactive vitamin B 12 and is well absorbed in humans. Nutrients, 12(10), Article 3067. https://doi.org/10.3390/nu12103067

72. Rocchetti, G., Rebecchi, A., Zhang, L., Dallolio, M., Del Buono, D., Freschi, G. et al. (2023). The effect of common duckweed (Lemna minor L.) extract on the shelf-life of beef burgers stored in modified atmosphere packs: A metabolomics approach. Food Chemistry: X, 20, Article 101013. https://doi.org/10.1016/j.fochx.2023.101013

73. Efremov, A.N., Sviridenko, B.F., Toma, C., Mesterházy, A., Murashko, Y.A. (2019). Ecology of Stratiotes aloides L. (Hydrochoritaceae) in Eurasia. Flora, 253, 116–126. https://doi.org/10.1016/j.flora.2019.03.009

74. Cook, C.D.K., Urmi-König, K. (1983). A revision of the genus Stratiotes (hydrocharitaceae). Aquatic Botany, 16(3), 213–249. https://doi.org/10.1016/0304-3770(83)90035-9

75. Ефремов, А.Н., Свириденко, Б.Ф. (2008) Экобиоморфа телореза обыкновенного Stratiotes abides L. (Hydrocharitaceae) в Западно-Сибирской части ареала. Биология внутренних вод, 3, 29–34.

76. Бобров, Ю.А. (2017). Жизненные формы водных трав Северо-Востока Европейской России. Arctic Environmental Research, 17(2), 104–112. https://doi.org/10.17238/issn2541-8416.2017.17.2.104

77. Ефремов, А.Н., Филоненко, А.В., Свириденко, Б.Ф. (2015). Анатомия и морфология репродуктивных органов Stratiotes aloides L. (Hydrocharitaceae). Биология внутренних вод, 4, 1223. https://doi.org/10.7868/S0320965215040051

78. Turner, B., Hameister, S., Hudler, A., Bernhardt, K.-G. (2021). Genetic diversity of Stratiotes aloides L. (Hydrocharitaceae) stands across Europe. Plants, 10(5), Article 863. https://doi.org/10.3390/plants10050863

79. Germ, M., Gaberščik, A. (2025). Water or dry land — that is not a question for amphibious plant species. International Journal of Limnology, 61, Article 1. https://doi.org/10.1051/limn/2024025

80. Ефремов, А.Н., Бельгибаева, А.М., Алехина, Е.А., Филимонова, М.В., Свириденко, Б.Ф., Шалыгин, С.П. и др. (2012). Компонентный состав Stratiotes aloides (Hydrocharitaceae) в водоемах бассейна Среднего Иртыша. Химия растительного сырья, 4, 161–166.

81. Ефремов, А.Н., Алехина, Е.А., Иминова, Д.Е., Омаргалиева, Н.К. (2016). К вопросу о содержании аминокислот и водорастворимых витаминов у некоторых представителей семейства Hydrocharitaceae. Химия растительного сырья, 1, 85–91. https://doi.org/10.14258/jcprm.201601924

82. Алехина, Е. А. Ефремов, А.Н., Емельянова, О.А. (2018). Растения семейства Hydrocharitaceae — новый источник дубильных веществ? Химия растительного сырья, 3, 179–184. https://doi.org/10.14258/jcprm.2018033723

83. Kotelnaya, Ya.I., Alekhina, Е.А., Efremov, А. N. Bolotova Ya, V., Guselnikova, M.V., Nikolaenko S. A. et al. (2019). Notes on the saponins in the plants of the family Hydrocharitaceae. Botanica Pacifica: A Journal of Plant Science and Conservation, 8(1), 57–61. https://doi.org/10.17581/bp.2019.08101

84. Исайкина, Н.В., Коломиец, Н.Э., Абрамец, Н.Ю., Марьин, А.А. (2022) Исследование травы крапивы двудомной (Urtica dioica L.), произрастающей в некоторых районах Европейской части России и Сибири. Химия растительного сырья, 3, 127–138. https://doi.org/10.14258/jcprm.20220310873

85. Рябинина, Е.И., Зотова, Е.Е., Пономарева, Н.И. (2012). Потенциометрическое определение дубильных веществ в лекарственном растительном сырье. Фармация, 2, 8–10.

86. Ефремов, А.Н., Иминова, Д.Е., Алехина, Е.А., Дюсембаев, С.Т. (2017). Содержание химических элементов в фитомассе некоторых представителей семейства Hydrocharitaceae. Химия растительного сырья, 1, 107–111. https://doi.org/10.14258/jcprm.2017011294

87. Байкалова, Л.П., Горбачев, И.А. (2019). Влияние видового состава трав на содержание макроэлементов и кормовых единиц в пастбищных кормах. Вестник КрасГАУ, 11(152), 90–97. https://doi.org/10.36718/1819-4036-2019-11-90-97

88. Рабинович, Г.Ю., Васильева, Е.А. (2024). Создание и перспективы использования препаратов для кормопроизводства и животноводства. Аграрный научный журнал, 8, 95–102. https://doi.org/10.28983/asj.y2024i8pp95-102

89. Рабинович, Г.Ю., Васильева, Е.А. (2019). Разработка премикса с адаптогенными свойствами и его апробация. Достижения науки и техники АПК, 33(8), 72–76. https://doi.org/10.24411/0235-2451-2019-10816

90. Lima, N.P., Maciel, G.M., Pinheiro, D.F., Ribeiro I. S., Lima, N.F., Liviz, C.A.M. et al. (2025). Innovative protein sources from freshwater and marine environments — A comprehensive review. Measurement: Food, 17, Article 100215. https://doi.org/10.1016/j.meafoo.2025.100215

91. Morach, B., Witte, B., Walker, D., von Koeller, E., Grosse-Holz, F., Rogg, J. et al. (2021). Food for thought: The protein transformation. Industrial Biotechnology, 17(3), 125–133. https://doi.org/10.1089/ind.2021.29245.bwi

92. Li, Y., Xiang, N., Zhu, Y., Yang, M., Shi, C., Tang, Y. et al. (2024). Blue source-based food alternative proteins: Exploring aquatic plant-based and cell-based sources for sustainable nutrition, Trends in Food Science and Technology, 147, Article 104439. https://doi.org/10.1016/j.tifs.2024.104439

93. Raja, K., Kadirvel, V., Subramaniyan, T. (2022). Seaweeds, an aquatic plant-based protein for sustainable nutrition — A review. Future Foods, 5, Article 100142. https://doi.org/10.1016/j.fufo.2022.100142

94. Farid, M.S., Anjum, R., Yang, Y., Tu, M., Zhang, T., Pan, D. et al. (2024). Recent trends in fermented plant-based analogues and products, bioactive peptides, and novel technologies-assisted fermentation. Trends in Food Science and Technology, 149, Article 104529. https://doi.org/10.1016/j.tifs.2024.104529